货号：B006

规格：50mL

产品简介及说明：

1. NP-40裂解液(NP-40 Lysis Buffer)是一种比较温和的细胞组织裂解液。

2. NP-40裂解液裂解得到的蛋白样品可以最大限度地保持蛋白的活性状态(native)，可以用于常规的Western、IP和Co-IP和ELISA等。

3. NP-40裂解液的主要成分为Tris(pH7.4)、NaCl、NP-40等。

4. 用NP-40裂解液裂解得到的蛋白样品，可以采用本公司《BCA蛋白浓度测定试剂盒》(货号B012)测定蛋白浓度。试剂盒清单：

保存条件：-20°C保存，有效期12个月。

使用说明：

1. 准备即用型裂解缓冲液：

向每1mL预冷的裂解缓冲液中加入磷酸酶抑制剂(自备)、蛋白酶抑制剂(自备)，混匀，冰上预冷待用。

注：即用型缓冲液建议现用现配，30min内使用。

2. 细胞总蛋白提取：

a. 贴壁细胞：去除培养液，加入适量1×PBS，轻柔漂洗一遍，不要扰动贴壁细胞。按照6孔板每孔加入100-200μL裂解液的比例加入裂解液，移液器吹打数下，使裂解液和细胞充分接触，冰上裂解细胞5min，用细胞刮刀刮下细胞收集于1.5mL离心管中，冰上继续裂解15min，间歇混匀。

b. 悬浮细胞：450g 4°C离心5min收集细胞；用适量1×PBS重悬细胞，450g 4°C离心5min收集细胞；重复漂洗细胞一次；按照细胞沉淀体积(PCM, Packed Cell Volume)20μL加入200μL裂解缓冲液的比例加入裂解液，混匀细胞沉淀，冰浴处理15min，间歇混匀。

注：2×10⁶Jurkat细胞，其细胞沉淀体积(PCM)大约为20μL。

c. 裂解细胞：裂解混合物超声波处理(超声条件根据自有仪器调整)；如没有超声破碎仪，可以使用注射器用27G针头处理裂解物10-15次，以彻底裂解细

胞。冰浴处理15min。

注：裂解中细胞会释放出变性的核酸，呈团状粘稠透明样，如不进行超声或针

头裂解处理，会导致裂解物非常粘稠，大大降低蛋白提取得率和纯度。研究蛋白互作实验，如Co-IP，考虑到超声处理会影响蛋白之间的结合，可以不进行超声处理。

d. 离心收集上清：充分裂解后，4°C 16000g离心10min，取上清，即可进行后续的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。

3. 组织样品蛋白提取：

a. 手术切除的组织块迅速置于预冷的PBS或生理盐水中，漂洗数次，洗净组织血迹，用滤纸吸干组织表面液体，将组织切成细小的碎片。

b. 按照每20mg组织加入200μL裂解液的比例加入即用型裂解液。(如果裂解不充分可以适当添加更多的裂解液，如果需要高浓度的蛋白样品，可以适当减少裂解液的用量。)

c. 用玻璃匀浆器冰浴匀浆5-10次，收集匀浆后的裂解混合物，超声波处理(超声条件根据自有仪器调整)；如没有超声破碎仪，可以使用注射器用27G针头处理裂解物10-15次,以彻底裂解细胞。裂解物冰浴处理15min。

注：裂解中细胞会释放出变性的核酸，呈团状粘稠透明样，如不进行超声或针头裂解处理，会导致裂解物非常粘稠，大大降低蛋白提取得率和纯度。

充分裂解后，4°C 16000g离心10min，取上清，即可进行后续的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。

注意事项：

1. 为取得最佳的使用效果，尽量避免过多的反复冻融。可以适当分装后使用。

2. 需自备蛋白酶抑制剂和磷酸酶抑制剂。

3. 裂解样品的所有步骤都需在冰上或4°C进行。

4. 所有的试剂及器具均需预冷后使用,以保持蛋白质的完整性和活性。

5. 产品中的保存条件及有效期均以未开封情况下计算，为了防止产品与空气接触发生化学反应影响产品性能，将未使用完毕的组分按存储要求保存同时建议开封后的组分尽快使用完毕。

6. 裂解细胞步骤使用超声处理或针头处理极其关键，否则蛋白得率会很低。

7. 一般常规提取的蛋白样品，进行后续试验不需要透析，但如果需要较大量的提取蛋白或后续试验结果不理想，则需要将提取的蛋白样品进行透析脱盐。

8. 一般常规提取的蛋白样品，进行后续试验不需要透析，但如果需要较大量

的提取蛋白或后续试验结果不理想，则需要将提取的蛋白样品进行透析脱盐。

9.  提取的蛋白质可以采用本公司《BCA蛋白浓度测定试剂盒》(货号B012)进行蛋白浓度测定，由于裂解缓冲液中含有较高浓度的去垢剂，不能用Bradford法测定样品的蛋白浓度。

Version 2022092201